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GSTSep Glutathione Agarose Resin 4FF谷胱甘肽高速纯化树脂(用于GST标签蛋白纯化)
GSTSep Glutathione Agarose Resin 4FF谷胱甘肽高速纯化树脂(用于GST标签蛋白纯化)
Product Introduction

GSTSep Glutathione Agarose Resin 4FF谷胱甘肽高速纯化树脂(用于GST标签蛋白纯化)

产品信息

产品名称      

产品编号

规格

储存

价格(元)

GSTSep Glutathione Agarose Resin 4FF谷胱甘肽高速纯化树脂(用于GST标签蛋白纯化)

YB077D

10 mL

4℃

1238.00

GSTSep Glutathione Agarose Resin 4FF谷胱甘肽高速纯化树脂(用于GST标签蛋白纯化)

YB077D

50 mL

4℃

4568.00

GSTSep Glutathione Agarose Resin 4FF谷胱甘肽高速纯化树脂(用于GST标签蛋白纯化)

YB077D

100 mL

4℃

7928.00

GSTSep Glutathione Agarose Resin 4FF谷胱甘肽高速纯化树脂(用于GST标签蛋白纯化)

YB077D

1000 mL

4℃

54686.00


产品描述

GSTSep Glutathione Agarose Resin 4FF是一种GST标签蛋白纯化树脂,结构上是以高度交联的4%琼脂糖凝胶为基质,通过12个原子的间隔臂,用化学方法共价结合还原型谷胱甘肽制作而成,具有更高的物理化学特性,可以耐受更高的压力,在相对较高的流速下,实现对目的蛋白的纯化,更适于工业大规模蛋白的纯化。

此外,本品特异性好,性价比高,可以一步纯化各种表达系统中谷胱甘肽-S-转移酶、谷胱甘肽依赖性蛋白和谷胱甘肽重组衍生物。


产品性质

基质(Matrix)

高度交联的4%琼脂糖微球

配体(Ligand)

通过12原子间隔臂偶联的谷胱甘肽

粒径(Bead   size)

45-165 µm

载量(Capacity)

>10 mg GST protein/mL基质(40   kDa)

最大压力(PressureMax

0.3 MPa,3 bar

pH稳定范围(pH   range)

3-12

储存缓冲液(Buffer)

20%乙醇


运输和保存方法

冰袋运输。4℃保存,有效期2年。

需准备试剂

所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤除菌。

结合/洗杂缓冲液:PBS,pH 7.4(140 mM NaCl,2.7 mM KCl,10 mM Na2HPO4,1.8 mM KH2PO4,pH 7.4)

洗脱缓冲液:50 mM Tris-HCl,10 mM 还原型谷胱甘肽,pH 8.0

注:结合/洗杂缓冲液或者洗脱缓冲液中可加入1-10 mM DTT。

 

使用方法

注:样品在上样前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤,减少杂质以防阻塞柱子。


1 GSTSep Glutathione Agarose Resin 4FF的装填(适用于各种中压色谱层析柱的填装)

1)用去离子水冲洗层析柱底筛板与接头,确保柱底筛板上无气泡,关闭柱底出口,并在柱底部留出1-2 cm的去离子水。

2)将树脂悬浮起来,小心的将浆液连续地倒入层析柱中。用玻璃棒沿着柱壁倒入浆液可减少气泡的产生。
3)如果使用储液器,应立即在层析柱和储液器中加满水,将进样分配器放置于浆液表面,连接至泵上,避免在分配器或进样管中产生气泡。
4)打开层析柱底部出口,开起泵,使其在设定的流速下进行。最初应让缓冲液缓慢流过层析柱,然后缓慢增加至最终流速, 这样可避免液压对所形成柱床的冲击,避免柱床形成的不均匀。如果达不到推荐的压力或流速,可以用所使用泵的最大流速,这样也可以得到一个很好的装填效果。
注:在随后的色谱程序中,不要超过最大装柱流速的75%,当柱床高度稳定后,在最后的装柱流速下至少再上3倍柱床体积的去离子水。标上柱床高度。

5)关闭泵,关闭层析柱出口。

6)如果使用储液器,去除储液器,将分配器至于层析柱中。

7)将分配器推向柱子至标记的柱床高度处。允许装柱液进入分配器,锁紧分配器接头。

8)将装填好的层析柱连接至泵或色谱系统中,开始平衡。如果需要可以重新调整分配器。


样品纯化

1)平衡:用5倍柱体积
的结合Buffer平衡柱子,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。

2)上样:Resin平衡后,加入蛋白样品,使其与Resin充分接触,提高目的蛋白回收率,收集流出液。

3)洗杂:用10-15倍柱体积的洗杂缓冲液进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液。

4)洗脱:使用5-10倍柱体积的洗脱缓冲液,收集洗脱液,即目的蛋白溶液。
5)清洗与保存:依次使用3倍柱体积的结合Buffer和5倍柱体积的去离子水平衡填料,最后用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%乙醇中,置于4℃保存,防止填料被细菌污染。


3 SDS-PAGE检测

将纯化过程中得到的样品(包括原始样品、流出组分、洗杂及洗脱组分等)利用SDS-PAGE进行检测,判定其纯化效果。


填料清洗

GST标签蛋白纯化产品可以重复使用而无需再生,但随着非特异结合蛋白的增多和蛋白的聚集,会造成流速和结合载量性能下降,此时需对填料进行清洗。

1)去除一些沉淀或变形物质

用2倍柱体积的6 M盐酸胍溶液进行清洗,然后立即用5倍柱体积的PBS,pH 7.4清洗。

2)去除一些疏水性吸附造成的非特异性吸附物质

用3-4倍柱体积的70%乙醇或2倍柱体积1% Triton X-100清洗,然后立即用5倍柱体积的PBS,pH 7.4清洗。


注意事项

1)请勿冷冻保存本产品。

2)GSTSep Glutathione Agarose Resin使用前一定要充分颠倒若干次,使琼脂糖珠混合均匀。

3)所有操作过程中,样本需要在4℃或冰上操作。

4)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

附表 问题及解决方案

问题

可能原因

推荐解决方案

柱子反压过高

填料被堵塞

清洗树脂

裂解液中含有微小的固体颗粒,建议上样前最好用0.22 µm或0.45 µm滤膜过滤,或离心去除

样品太黏稠

样品中含高浓度的核酸,延长破碎时间直至粘度降低,或添加DNaseI (终浓度为5 µg/mL),Mg2+(终浓度1 mM),冰上孵育10-15 min

缓冲液太黏稠

有机试剂或蛋白稳定试剂(如甘油等)可能会引起反压增高,降低操作流速

洗脱组分中无目的蛋白

GST标签蛋白变性了

使用温和的裂解条件,实验条件以经验为准

过度的裂解使目的蛋白变性

目的蛋白聚集产生沉淀

在细胞裂解前溶液中加入DTT,终浓度为1-10 mM

融合蛋白改变了GST的构象,影响了目的蛋白的结合力

测定pGEX中GST的结合力,对载体进行超声处理,检测其结合力。如果载体中GST有很高的亲和力,有可能是改变融合蛋白的构象从而降低了GST标签蛋白的亲和力

降低结合温度至4℃,充分清洗

柱子平衡时间太短,目的蛋白不是在pH 6.5-pH 8.0范围内结合

用pH 6.5-pH 8.0的buffer进行充分的平衡,如PBS

目的蛋白没有完全洗脱下来

洗脱体积太少

增加洗脱液体积,减小洗脱流速。

洗脱液中谷胱甘肽浓度太低

增加洗脱液中谷胱甘肽浓度,可尝试用50 mM Tris-HCl,20-40 mM还原型谷胱甘肽pH 8.0洗脱

低pH影响洗脱

在不增加洗脱液中谷胱甘肽量时,提高洗脱液中pH至pH 8-9会有改善

增加洗脱液中离子强度,如0.1-0.2 M NaCl

洗脱液中谷胱甘肽被氧化

使用新鲜配制的洗脱液

加入DTT

非特异性疏水作用影响目的蛋白的溶解和洗脱

洗脱液中加入非离子型洗涤剂,如0.1%的Triton X-100或者2%正辛基-β-D-吡喃葡糖苷Tween-20

电泳或Western Blot检测中发现多条带

Mr 70000蛋白与目的蛋白一起纯化下来

Mr 70000蛋白可能是大肠杆菌基因DnaK的产物,可以在目的蛋白中加入50 mM Tris-HCl,2 mM ATP,10 mM MgSO4,pH 7.4在37℃加热10min去除

可通过ATP-琼脂糖胶或离子交换来去除目的蛋白溶液中的dnaK蛋白

GST融合蛋白已经发生降解

在裂解液中加入蛋白酶抑制剂,如加入1 mM PMSF

可能是蛋白酶对目的蛋白部分降解造成的,可使用蛋白酶缺陷型宿主菌(如lon-ompT

细胞破碎过度

减少细胞破碎时间,超声前加入溶菌酶(菌液体积的0.1倍10 mg/mL溶菌酶,25   mM Tris-HCl,pH 8.0),避免发泡导致蛋白酶变性,过度超声破碎增加宿主内源蛋白与GST融合目的蛋白的共纯化。

共价共纯化

包括促进蛋白正确折叠的分子伴侣的共纯化,如:DnaK(Mr~70000),DnaJ(Mr~37000),GrpE(Mr~40000),GroEL(Mr~57000),GroES(Mr~10000)

抗体与E. coli的各种蛋

白反应

抗体吸附E. coli蛋白:GST-抗体;超声处理去除GST抗体,可以用Western Blot检测


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