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Reactive Oxygen Species Assay Kit 活性氧(ROS)检测试剂盒
Reactive Oxygen Species Assay Kit 活性氧(ROS)检测试剂盒
Product Introduction

Reactive Oxygen Species Assay Kit 活性氧(ROS)检测试剂盒

产品信息

产品名称

产品编号

规格

价格(元)

Reactive Oxygen Species Assay Kit 活性氧(ROS)检测试剂盒

YB001X

1 Kit (1000 tests)

965.00


检测原理


活性氧检测试剂盒(Reactive Oxygen Species Assay Kit)是一种基于荧光染料DCFH-DA(2,7-Dichlorodi -hydrofluorescein diacetate)的荧光强度变化,定量检测细胞内活性氧水平的最常用方法。

DCFH-DA本身没有荧光,可以自由穿过细胞膜。进入细胞内后,可以被细胞内的酯酶水解生成DCFH,而DCFH不会通透细胞膜,因此探针很容易被积聚在细胞内。细胞内的活性氧能够氧化无荧光的DCFH生成有荧光的DCF。绿色荧光强度与活性氧的水平成正比。在最大激发波长480 nm,最大发射波长525 nm处,使用荧光显微镜,流式细胞仪或激光共聚焦显微镜等检测荧光信号。Rosup为活性氧阳性诱导药物,根据其荧光信号强度,可分析活性氧的真正水平。

以96孔板每孔加样量为标准,本试剂盒可测定约1000次。


产品组分

组分

规格

保存方法

50101-A

DCFH-DA(10 mM)

0.1 mL

-20℃

50101-B

活性氧阳性对照(Rosup, 100 mM)

1.0 mL

-20℃


运输与保存

冰袋运输。-20℃干燥保存,避免强光直射。有效期一年。


操作过程

1.装载探针

1.1 原位装载探针(仅适用于贴壁细胞)

1)细胞准备:检测前一天进行细胞铺板,确保检测时细胞汇合度达到50~70%。

【注】:必须保证细胞状态健康,且检测时不会过度生长。
2) 药物诱导:去除细胞培养液,加入适量经合适的缓冲液或无血清培养基稀释到工作浓度的药物,于37℃细胞培养箱内避光孵育,具体诱导时间根据药物本身特性,以及细胞类型来决定。

(可选)阳性对照:先用无血清培养基等稀释阳性对照(Rosup, 100 mM)到常用工作浓度100 μM,加入细胞,一般37℃避光孵育30 min-4 h可显著看到活性氧水平提高,但依细胞类型会有比较明显差异。【如,HeLa细胞孵育30 min;MRC5人胚胎成纤维细胞1.5 h;】

3)探针准备:探针装载前按照1:1000用无血清培养液稀释DCFH-DA,使其终浓度为10 μM。
4) 探针装载:吸除诱导用药物,加入适当体积稀释好的DCFH-DA工作液。加入的体积以能充分盖住细胞为宜。例如;对于6孔板通常不少于1000 μL,对于96孔板通常不少于100 μL。37℃细胞培养箱内避光孵育30 min。

5) 细胞清洗:用无血清培养液洗涤细胞1~2次,以充分去除未进入细胞内的DCFH-DA。 

 

1.2 收集细胞后装载探针:适用于贴壁细胞和悬浮细胞。

1) 细胞准备:按照标准方法培养细胞,必须保证检测用细胞状态健康。按照适当方法,清洗并收集足量的细胞。
2)药物诱导:将收集好的细胞悬浮于适量稀释好的药物,于37℃细胞培养箱内避光孵育,具体诱导时间根据药物本身特性,以及细胞类型来决定。(可选)阳性对照:先用无血清培养基等稀释阳性对照(Rosup, 100 mM)到常用工作浓度100 μM,加入细胞,一般37℃避光孵育30 min-4 h可显著看到活性氧水平提高,但依细胞类型会有比较明显差异。【如,HeLa细胞孵育30 min;MRC5人胚胎成纤维细胞1.5 h;】

3) 探针准备:探针装载前,按照1:1000用无血清培养液稀释DCFH-DA,使其终浓度为10 μM。
4) 探针装载:去除细胞内药物,离心收集细胞,加入适当稀释好的探针,使其细胞密度为1.0×106~2.0×107。【注】:细胞密度需根据后续的检测体系,检测方法,以及检测总量来进行调整。如,对于流式分析,单管检测内细胞数目不少于104,也不可多于106。每隔3-5 min颠倒混匀一下,使探针和细胞充分接触。

5)细胞清洗:用无血清细胞培养液洗涤细胞1~2次,以充分去除未进入细胞内的DCFH-DA。

2检测

原位装载探针法:激光共聚焦显微镜直接观察,或收集细胞后用荧光分光光度计、荧光酶标仪或流式细胞仪检测。

收集细胞后装载探针:用荧光分光光度计、荧光酶标仪或流式细胞仪检测,也可以用激光共聚焦显微镜直接观察。

3参数设置

使用488 nm激发波长,525 nm发射波长,实时或逐时间点检测刺激前后荧光的强弱。DCF的荧光光谱和FITC非常相似,可以用FITC的参数设置检测DCF。DCF的激发光谱和发射光谱参考下图。

image.png 

其他事项说明

1)对于刺激时间较短(通常2 h以内)的细胞,也可先装载探针,后用活性氧阳性对照和/或感兴趣药物刺激细胞,如阳性对照刺激,应先加入适量探针于37℃避光孵育30 min;然后再加入等体积2×阳性对照Rosup溶液(200 μM),37℃避光诱导30 min-4 h;
2)阳性对照Rosup通常浓度为100 μM。通常刺激后30 min-4 h可以观察到显著的活性氧水平升高。对于不同的细胞,活性氧阳性对照的效果可能有较大的差别。如果在刺激后30 min内观察不到活性氧的升高,可延长诱导时间或适当提高活性氧阳性对照的浓度。如果活性氧升高得过快,可缩短诱导时间或适当降低活性氧阳性对照的浓度。
3)对于某些细胞,如果发现没有刺激的阴性对照细胞荧光也比较强,可以按照1∶2000~1∶5000稀释DCFH-DA,使装载探针时DCFH-DA的浓度为2~5 μM。探针装载的时间也可以根据情况在15~60 min内适当进行调整。
4)活性氧阳性对照(Rosup)仅仅用于作为阳性对照的样品,并不是在每个样品中都需加入活性氧阳性对照。


注意事项

1) 探针装载后,一定要洗净残余的未进入细胞内的探针,否则会导致背景较高。

2) 探针装载完毕并洗净残余探针后,可以进行激发波长的扫描和发射波长的扫描,以确认探针的装载情况是否良好。

3) 尽量缩短探针装载后到测定所用的时间(刺激时间除外),以减少各种可能的误差。

4) 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。


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